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Técnicas de refrigeración, Diapositivas de Parasitología
Técnicas de refrigeración, los diferentes tipos que existen para refrigerar una muestra en el laboratorio clínico.
Tipo: Diapositivas
2021/2022
1 / 10
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presentado por:
natalia Castilla, Valentina Molina y Andreina Duarte
técnicas de conservación
¿como se conservan las muestras en el laboratorio?
En general, las muestras deberán guardarse
en un lugar limpio, seco, oscuro, fresco y
suficientemente ventilado. Habrá que
controlar con regularidad la temperatura de
almacenamiento. La temperatura de estas
instalaciones no podrá ser inferior a 0 °C ni
superar los 30 °C.
Conservación de muestras de materia fecal Materia fecal recién emitida (menos de 1 hora) en frasco estéril y conservarla a temperatura ambiente, si no es posible procesar la muestra esta deberá conservarse en congelador hasta 8 Horas y/o aplicar conservadores en plazos mayores conservación de muestra fecal.
métodos de conservación Para el examen de material fecal, lo ideal es el análisis directo con solución salina o lugol sin preservador. Estas son las muestras útiles en el CPS inmediato directo. Las muestras líquidas o blandas deben analizarse primero, por la mañana, debido a que los trofozoitos sobreviven pocas horas. Las duras, como tienen quistes de protozoarios huevos de helmintos, resisten más y pueden analizarse por la tarde.
PVA: (alcohol polivinílico: Es excelente para trofozoitos, útil en heces acuosas y disentéricas y material aspirado por sigmoidoscopía. Para 10 ml de fijador se utilizan 1-2ml de material. Las muestras así fijadas, pueden teñirse con hematoxilina férrica. Para prepararlo deposite 100 ml de fijador Shaudinn a un vaso de precipitado de 250 o 500 ml sobre una placa de calentamiento y agite con la barra magnética sin calentar la solución.
FORMALDEHIDO. MIF: (MERTHIOLATE-IODO-FORMOL):
Preserva quistes de protozoos (no
trofozoitos), huevos y larvas de
helmintos por muchos meses. Por
cada parte de la muestra se
agregan 5 partes de formalina al
10% (con este se puede realizar la
técnica de sedimentación de
formoléter).
Tiñe y preserva todos los trofozoitos y estadios de parásitos intestinales. La desventaja es que el iodo es inestable. Se utiliza una parte de heces y 10 partes de MIF. La muestra preservada se emplea en frotis directos. Para la preparación se prepara la solución A (40 partes de tintura de merthiolate Lilly, 5 partes de formaldehído comercial y una parte de glicerol) y la solución B (5% de iodo en 10% de ioduro de potasio acuoso).