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Informe - Grupo2 - Simulador espectrofotometría, Monografías, Ensayos de Bioquímica

Informe - Grupo2 - Simulador espectrofotometría.pdf

Tipo: Monografías, Ensayos

2020/2021
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Subido el 17/07/2021

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“Año del Bicentenario del Perú: 200 años de
Independencia”
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA
ACADÉMICO PROFESIONAL DE MEDICINA
Bioquímica y Biología Molecular
SIMULADOR ESPECTROFOTOMETRÍA
DOCENTE
JUAN DAMIAN ICANAQUE ORDINOLA
GRUPO 2
INTEGRANTES
STEFANNY NOEMI GUERRERO RAMOS
MARÍA ELENA PERICHE PEÑA
MILAGROS ASTUQUIPÁN RUEDA
WENCE CASTILLO CORTEZ (NO APORTÓ)
JHOAN CHINGUEL RIOS (NO APORTÓ)
PERÚ 2021
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¡Descarga Informe - Grupo2 - Simulador espectrofotometría y más Monografías, Ensayos en PDF de Bioquímica solo en Docsity!

“Año del Bicentenario del Perú: 200 años de

Independencia”

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD

ESCUELA

ACADÉMICO PROFESIONAL DE MEDICINA

Bioquímica y Biología Molecular

SIMULADOR ESPECTROFOTOMETRÍA

DOCENTE

JUAN DAMIAN ICANAQUE ORDINOLA

GRUPO 2

INTEGRANTES

STEFANNY NOEMI GUERRERO RAMOS

MARÍA ELENA PERICHE PEÑA

MILAGROS ASTUQUIPÁN RUEDA

WENCE CASTILLO CORTEZ (NO APORTÓ)

JHOAN CHINGUEL RIOS (NO APORTÓ)

PERÚ 2021

1. Relación entre absorbancia y concentración

Materiales: Para-nitrofenol (pNF) y espectrofotómetro. (simulador) Calibración: Se llenó una cubeta con 3 mℓ de agua, y se introdujo en el espectrofotómetro, se ajustó la longitud de onda a 405 nm y pulsa el botón “A=0”. Se sacó la cubeta y se vació. Procedimiento: Utilizando el para-nitrofenol (pNF) y agua, se prepararon 3 muestras en sendas cubetas, que contengan distintos volúmenes de pNF y siempre un volumen total de 3 mL. Después, se introdujeron de una en una al espectrofotómetro y anota sus medidas de absorbancia. Procedimiento del volumen de pNF y del volumen de agua (H 2 o) CUBETA 1 2 2 VOL. pNF 1 ml 2 ml 3 ml VOL. H 2 O 2 ml 1 ml 0 ml Resultados de la absorbancia (A 405 ) CUBETA 1 2 3 A 405 0.528 1.073 1. Análisis cualitativo La cubeta 1 que contiene mayor cantidad de agua obtuvo el valor de absorbancia menor, la cubeta 2 al tener más cantidad de pNF y menos cantidad de agua obtuvo el segundo valor más alto, y la tercera cubeta al tener solo pNF obtuvo el valor mayor de absorbancia. Análisis cuantitativo Calcula la concentración de pNF en la mezcla final de cada cubeta, sabiendo que la concentración en la botella es de 80 μM pNF. Prepara una tabla con los datos y traza una gráfica representando A frente a C. ¿Cómo puedes describir lo que observas?

  • La gráfica muestra un ajuste lineal de los puntos y se puede apreciar que los datos tienen una tendencia lineal en la que la absorbancia es proporcional a la concentración de pNF. Se utiliza la formula C 1 V 1 =C 2 V 2 CUBETA Fórmula para C (μM) C2=C1V1/V2 C (μM) A 1 C 2 = 80 μM (1ml) / 3ml = 26.67 0. 2 C 2 = 80 μM (2ml) / 3ml = 53.33 1. 3 C 2 = 80 μM (3ml) / 3ml = 80 1. Se mezcla 1 mℓ de una muestra problema con 2 mℓ de agua. Calcula la concentración de pNF en la muestra de partida si el ensayo ha proporcionado un valor A405 = 0. Se procede a despejar X de la ecuación de la recta: y = 0.00202x – 0. Tenemos que x = y+0.0097 / 0.

CUBETA Fórmula para C (mg/l) C2=C1V1/V 1 C 2 = 800 mg/l (0ml) / 3ml = 0 2 C 2 = 800 mg/l (1ml) / 3ml = 266.66 mg/L 3 C 2 = 800 mg/l (2ml) / 3ml = 533.33 mg/L A partir de la gráfica: Se mezcla 1 ml de una muestra problema con reactivo de Bradford, para un volumen total de 3 ml. Calcula la concentración de proteínas en la muestra de partida si el ensayo ha proporcionado un valor A595 = 0. Despejando x de la ecuación de la recta: y=-0.0005x-0. Tenemos que x=y+0.0003/ - 0. en donde x es la concentración y y la absorbancia X= 0.163+0.0003/-0.0005= - 326.6 mg/L

3. Fundamento de un ensayo de cuantificación de proteínas

El método de Bradford es un ensayo habitual para medir la concentración de proteínas en una muestra. Se basa en que la unión del colorante azul de Coomassie (Coomassie Brilliant Blue G250) a las proteínas modifica el espectro visible. Materiales: Reactivo de bradford, proteínas disueltas en agua, espectofotómetro, celdas. Procedimiento: Todas las cubetas deben contener 1 ml del reactivo de Bradford concentrado y un volumen total de 3 ml. En la primera cubeta no agregó proteina, mientras que otras dos cubetas se agregaron cantidades diferentes de la disolución de proteina. Utiliza agua para completar el volumen. Se introdujo la primera cubeta (que sólo contiene reactivo de Bradford) en el espectrofotómetro, y se ajustó la longitud de onda a 595 nm y pulsa el botón "A=0". A continuación, introdujo el resto de cubetas, de una en una, en el espectrofotómetro y se anotaron resultados de absorbancia.

Procedimiento volumen proteína, agua y reactivo Resultados de absorbancia (A 595 ) Cubeta 1 2 3 A 595 (nm) 0 0.006 0. Análisis cualitativo de resultados: Observa la relación entre el color de las cubetas y el valor de absorbancia. ¿Comparando entre sí las medidas, ¿observas alguna dependencia entre la absorbancia y la mayor o menor concentración de proteínas en la cubeta?

  • Sí, a mayor concentración de proteínas habrá mayor absorbancia debido a que son directamente proporcional. Análisis cuantitativo de resultados: Calcula la concentración de proteínas en la mezcla final de cada cubeta, sabiendo que la concentración en la botella es de 800 mg/l. Prepara una tabla con los datos y traza una gráfica representando A frente a C. ¿Cómo puedes describir lo que observas?
  • Se puede observar que, a mayor concentración de proteínas, mayor absorbancia. Entre más partículas hay en una muestra, estas absorberán más luz. La concentración y la absorbancia son directamente proporcionales. Al traficar, observamos una línea de tendencia no lineal y los puntos están alejados de está. Utilizando la formula C1V1 = C 2 V CUBETA Fórmula para C (mg/l) C2=C1V1/V 1 C 2 = 800 mg/l (0ml) / 3ml = 0 2 C 2 = 800 mg/l (1ml) / 3ml = 266.66 mg/L 3 C 2 = 800 mg/l (2ml) / 3ml = 533.33 mg/L

4. Espectro de absorción de la hemoglobina

El rojo de la hemoglobina es gracias a la absorción de la radiación visible, aunque también presenta picos de absorción en y cerca de la región ultravioleta. Materiales: Agua (H2O), hemoglobina (sustancia) y espectrofotómetro. (simulador) Calibración: Utilizando agua y la disolución de hemoglobina, prepara distintas diluciones y analiza su espectro UV-VIS completo. Para ello, llena una cubeta con hemoglobina y en las otras dos cubetas prepara sendas mezclas diferentes de hemoglobina con agua. Todas las cubetas deben tener un volumen total de 3 mℓ.

CUBETA 1 2 3

Vol. proteína 0 1 2 Vol. H 2 O 2 1 0 Vol. reactivo 1 1 1

1. Cubeta: 200 mg/L (3mL) / 3mL = 200 mg/ L 2. Cubeta: 200 mg/L (1mL) / 3mL = 66.7 mg/ L 3. Cubeta: 200 mg/L (2mL) / 3mL= 133.33 mg/ L Análisis cuantitativo de resultados: ¿Cómo puedes describir las conclusiones de lo observado? ¿Cuál de las longitudes de onda sería útil para determinar la concentración de muestras problema de hemoglobina?

  • La posición de longitud de la onda no cambia y los máximos locales disminuyen conforme la concentración disminuye. En las muestras muy diluidas hay pocas moléculas que absorban luz lo cual la absorbancia será menor. La longitud de onda más útil sería alrededor de 200- 800

5. Espectro de absorción de las diversas formas redox de la

hemoglobina

Se realizó un análisis comparativo del espectro de absorción en la región de luz visible entre las diversas formas de hemoglobina. Procedimiento: Se añadió a cada una de las cubetas 3 mℓ de una de las muestras: desoxihemoglobina, oxihemoglobina, metahemoglobina, carboxihemoglobina o cian metahemoglobina. Introduce cada una en el espectrofotómetro y registra su espectro. Espectro desoxihemoglobina - Espectro oxihemoglobina - Espectro metahemoglobina

Espectro carboxihemoglobina - Espectro cianmetahemoglobina. CUBETA 1 2 3 4 5 Tipo de hemoglo bina Desoxihemogl obina Oxihemogl obina Metahemogl obina Carboxihemog lobina Cianmetahemo globina λ máximos de absorció n